Марк Махлин - Аквариум в школе

Выяснение условий образования крахмала в клетках спирогиры [11] Для опыта можно использовать и другие водоросли. .

1. Культуру спирогиры хорошо освещать в течение 2–3 дней.

2. Взять из этой культуры одну нить. Рассмотреть под микроскопом несколько клеток в слабом растворе иода. Найти в каждой клетке зерна крахмала. Установить приблизительное их количество (много, мало).

3. Культуру спирогиры поставить в темное место на 4–5 дней при сохранении исходной температуры. По истечении этого срока вновь рассмотреть клетки спирогиры в слабом растворе йода. Установить, есть ли теперь в клетках крахмальные зерна.

4. В дневнике сделать записи о наблюдениях, к записям приложить рисунки. Сделать выводы о питании спирогиры на свету и в темноте и об образовании запаса питательных веществ в виде крахмальных зерен.

Проявление положительной реакции на свет у эвглены зеленой (положительный фототаксис).

1. В две пробирки налить на 2/3 густонаселенную культуру эвглены зеленой.

2. Затенить нижнюю половину первой пробирки. Для этого использовать черную бумагу, плотно привязав ее к пробирке, или опустить пробирку в прорезь картонного ящичка, оклеенного черной бумагой. Поставить пробирку на яркоосвещенное место на 30–40 мин.

3. Затенить аналогичным способом верхнюю половинку второй пробирки и также поставить на яркоосвещенное место на 30–40 мин.

4. Поочередно быстро освободить пробирки от затемнения. Рассмотреть их содержимое невооруженным глазом и через лупу.

5. Записать в дневник условия и результаты наблюдений. Дать объяснения.

6. Изменить вариант наблюдения (затенить среднюю часть пробирки или всю пробирку, оставив только круглое отверстие, направленное к источнику света и т. п.). Сделать записи в дневнике наблюдений.

Отрицательная реакция инфузории-туфельки на химическое раздражение (отрицательный хемотаксис).

1. На предметное стекло нанести каплю настоя с инфузориями-туфельками. Рядом на расстоянии 0,5–1 см нанести другой пипеткой каплю чистой воды или сенного настоя без инфузорий. Соединить обе капли «мостиком».

2. С края капли с инфузориями положить кристаллик поваренной соли.

3. Наблюдать за реакцией инфузорий через лупу. Отметить время, за которое все инфузории переплыли из одной капли в другую.

4. Наблюдения записать в дневник, дать объяснения и сделать выводы.

Движение амебы при разных температурных условиях.

1. На предметное стекло нанести каплю культуры с амебами. Препарат покрыть покровным стеклом, на котором предварительно сделаны «ножки», не позволяющие покровному стеклу плотно прилегать к амебе, и раздавить ее.

2. Под микроскопом наблюдать движение амебы при комнатной температуре. Установить способ передвижения и время, за которое образуется одна ложноножка. В дневнике наблюдений сделать схематические рисунки амебы с образующимися ложноножками.

3. Рассмотренный препарат охладить, положив его на 5 — 10 мин на снег или лед, но таким образом, чтобы талая вода не попала под покровное стекло. Рассмотреть под микроскопом образование ложноножек и установить время, за которое образуется одна из них. В дневнике наблюдений также сделать схематические рисунки амебы с образующимися ложноножками при пониженной температуре.

4. Сравнить образование ложноножек у амеб при комнатной и пониженной температурах, сделать выводы. Наблюдения и выводы записать в дневник.

Передвижение гидры.

1. В стеклянную банку емкостью от 0,25 до 1 л отсадить гидру, которую не кормили 3–4 дня. Посадить гидру на стенку банки. Для этого из стеклянной трубки, с помощью которой гидру вынули из аквариума, выпустить ее на стенку наклоненной банки. Положение байки не изменять, пока гидра не прикрепится к стенке.

2. Банку поставить в хорошо освещенное место, но не под прямые световые лучи.

3. Отметить на наружной стенке банки с гидрой ее место прикрепления. Для этого можно использовать маленький кусочек пластилина.

4. Затенить черной бумагой часть банки с местом прикрепления гидры. Место прикрепления должно быть в центре затененной площади и на противоположной стороне от источника света.

5. Ежедневно, снимая черную бумагу, отмечать новые места прикрепления гидры. В дневнике фиксировать их в виде схемы с указанием расстояния между местами прикрепления.

6. После 10-дневного наблюдения (можно взять другой срок) перенести весь путь передвижения гидры со стенки банки на бумагу. Вычислить расстояние, которое «прошагала» гидра за это время, и скорость гидры за сутки.